一、引言

二、實驗材料與設(shè)備

（一）實驗材料

1. 懸浮細胞系：根據(jù)研究目的選擇合適的懸浮細胞系，如血液細胞系（如淋巴細胞、白血病細胞等）、腫瘤細胞系（如淋巴瘤細胞、骨髓瘤細胞等）。確保細胞處于良好的生長狀態(tài)，無微生物污染。

2. siRNA：針對目標基因設(shè)計合成的 siRNA，其序列應(yīng)經(jīng)過嚴格的篩選和驗證，以確保具有高效的基因沉默效果。同時，需準備陰性對照 siRNA，用于排除非特異性轉(zhuǎn)染效應(yīng)。

3. 轉(zhuǎn)染試劑：選擇適用于懸浮細胞的轉(zhuǎn)染試劑，常見的有脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑、陽離子聚合物轉(zhuǎn)染試劑等。不同的轉(zhuǎn)染試劑具有不同的轉(zhuǎn)染效率和細胞毒性，需根據(jù)細胞類型和實驗要求進行選擇。

4. 細胞培養(yǎng)基：適合所選懸浮細胞生長的培養(yǎng)基，通常包含必需的營養(yǎng)成分、生長因子和血清等。培養(yǎng)基應(yīng)在無菌條件下配制和保存。

5. 無菌 PBS（磷酸鹽緩沖液）：用于洗滌細胞，保持細胞的滲透壓和 pH 穩(wěn)定。

6. 細胞培養(yǎng)耗材：如培養(yǎng)瓶、離心管、移液器吸頭、培養(yǎng)板等，均需經(jīng)過高壓滅菌處理，確保無菌。

（二）實驗設(shè)備

1. 細胞培養(yǎng)箱：提供適宜的溫度（通常為 37°C）、濕度（通常為 95%）和二氧化碳濃度（通常為 5%），以維持細胞的正常生長和代謝。

2. 離心機：用于細胞的離心收集和洗滌，轉(zhuǎn)速和離心時間需根據(jù)細胞類型和實驗要求進行調(diào)整。

3. 倒置顯微鏡：用于觀察細胞的形態(tài)和生長狀態(tài)，在轉(zhuǎn)染過程中可實時監(jiān)測細胞的健康狀況。

4. 移液器：包括不同量程的單道移液器和多道移液器，用于準確量取細胞懸液、培養(yǎng)基和轉(zhuǎn)染試劑等。

5. 無菌操作臺：提供無菌操作環(huán)境，防止微生物污染實驗樣品。

6. 熒光顯微鏡（可選）：如果使用帶有熒光標記的 siRNA 或轉(zhuǎn)染試劑，可通過熒光顯微鏡觀察轉(zhuǎn)染效率和細胞內(nèi) siRNA 的分布情況。

三、轉(zhuǎn)染步驟

（一）細胞培養(yǎng)與計數(shù)

1. 在無菌條件下，將懸浮細胞接種于合適的培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)板中，加入適量的細胞培養(yǎng)基，輕輕搖勻，使細胞均勻分布。

2. 將細胞培養(yǎng)物置于細胞培養(yǎng)箱中，在適宜的條件下培養(yǎng)，定期觀察細胞的生長狀態(tài)，確保細胞處于對數(shù)生長期。

3. 在轉(zhuǎn)染前，使用血細胞計數(shù)板或自動細胞計數(shù)儀對細胞進行計數(shù)，根據(jù)實驗要求調(diào)整細胞濃度至合適的范圍（通常為 [X] - [X] cells/mL）。

（二）siRNA 與轉(zhuǎn)染試劑的準備

1. siRNA 稀釋：根據(jù)實驗設(shè)計，將所需量的 siRNA 干粉溶解于適量的無 RNA 酶的 ddH?O 或?qū)Ｓ玫?siRNA 稀釋緩沖液中，輕輕混勻，制備成一定濃度的 siRNA 儲存液（通常為 20 μM）。然后，將 siRNA 儲存液進一步稀釋至工作濃度（通常為 50 - 200 nM），可根據(jù)轉(zhuǎn)染試劑的說明書和細胞類型進行優(yōu)化。

2. 轉(zhuǎn)染試劑稀釋：按照轉(zhuǎn)染試劑說明書的要求，將轉(zhuǎn)染試劑用無血清的細胞培養(yǎng)基稀釋至適當?shù)臐舛?。一般情況下，轉(zhuǎn)染試劑與 siRNA 的比例需通過預實驗進行優(yōu)化，以達到最佳的轉(zhuǎn)染效率和最小的細胞毒性。

（三）siRNA - 轉(zhuǎn)染試劑復合物的形成

1. 在無菌離心管中，將適量稀釋后的 siRNA 溶液與等體積或相應(yīng)比例的稀釋后的轉(zhuǎn)染試劑溶液輕輕混合，避免劇烈振蕩，以免破壞復合物的形成。

2. 將混合液在室溫下孵育一定時間（通常為 15 - 30 分鐘），使 siRNA 與轉(zhuǎn)染試劑充分結(jié)合，形成穩(wěn)定的 siRNA - 轉(zhuǎn)染試劑復合物。

（四）細胞轉(zhuǎn)染

1. 將培養(yǎng)中的懸浮細胞輕輕搖勻，吸取適量的細胞懸液（根據(jù)實驗要求和細胞密度確定）轉(zhuǎn)移至新的無菌離心管中。

2. 將預先制備好的 siRNA - 轉(zhuǎn)染試劑復合物緩慢滴加到含有細胞懸液的離心管中，邊滴加邊輕輕搖勻，使復合物均勻分布于細胞懸液中。

3. 將轉(zhuǎn)染后的細胞懸液轉(zhuǎn)移回培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)板中，輕輕搖勻，然后將培養(yǎng)物置于細胞培養(yǎng)箱中，在適宜的條件下繼續(xù)培養(yǎng)。

（五）轉(zhuǎn)染后培養(yǎng)與檢測

1. 轉(zhuǎn)染后培養(yǎng)：根據(jù)細胞類型和實驗?zāi)康?，確定轉(zhuǎn)染后的培養(yǎng)時間。在培養(yǎng)過程中，定期觀察細胞的生長狀態(tài)和形態(tài)變化，如有必要，可更換新鮮的細胞培養(yǎng)基，以維持細胞的正常生長和代謝。

2. 轉(zhuǎn)染效果檢測：在轉(zhuǎn)染后的適當時間點，可通過多種方法檢測 siRNA 的轉(zhuǎn)染效果和目標基因的沉默效率。

• 熒光檢測（如果使用熒光標記的 siRNA 或轉(zhuǎn)染試劑）：使用熒光顯微鏡觀察細胞內(nèi)的熒光信號，評估轉(zhuǎn)染效率。通過計算發(fā)出熒光的細胞數(shù)占總細胞數(shù)的比例，可得到大致的轉(zhuǎn)染效率。

• qRT - PCR 檢測：提取轉(zhuǎn)染后細胞的總 RNA，反轉(zhuǎn)錄為 cDNA，然后利用實時熒光定量 PCR 技術(shù)檢測目標基因的 mRNA 表達水平。與未轉(zhuǎn)染或陰性對照轉(zhuǎn)染的細胞相比，目標基因 mRNA 表達水平顯著降低表明 siRNA 成功沉默了目標基因。

• Western blot 檢測：收集轉(zhuǎn)染后細胞的蛋白質(zhì)，通過 Western blot 技術(shù)檢測目標蛋白的表達水平。目標蛋白表達量的減少可進一步證實 siRNA 對目標基因的沉默效果。

四、注意事項與優(yōu)化策略

（一）注意事項

1. 細胞質(zhì)量控制：確保使用的懸浮細胞處于良好的生長狀態(tài)，無微生物污染和其他異常情況。定期對細胞進行傳代培養(yǎng)，避免細胞老化對轉(zhuǎn)染效率和實驗結(jié)果的影響。

2. 實驗操作規(guī)范：在整個轉(zhuǎn)染過程中，嚴格遵守無菌操作原則，防止微生物污染。使用無 RNA 酶的耗材和試劑，避免 RNA 降解。操作過程中盡量減少對細胞的機械損傷，保持細胞的完整性。

3. 轉(zhuǎn)染試劑選擇與優(yōu)化：不同的懸浮細胞系對轉(zhuǎn)染試劑的敏感性和適用性不同。在選擇轉(zhuǎn)染試劑時，需參考其說明書和相關(guān)文獻，了解其對特定細胞類型的轉(zhuǎn)染效率和細胞毒性。同時，通過預實驗優(yōu)化轉(zhuǎn)染試劑與 siRNA 的比例、轉(zhuǎn)染時間和細胞密度等參數(shù)，以提高轉(zhuǎn)染效率并降低細胞毒性。

4. siRNA 質(zhì)量控制：合成的 siRNA 應(yīng)具有較高的純度和完整性。在使用前，可通過瓊脂糖凝膠電泳等方法檢測 siRNA 的質(zhì)量，確保其無降解和雜質(zhì)污染。同時，注意 siRNA 的保存條件，避免反復凍融。

（二）優(yōu)化策略

1. 優(yōu)化細胞密度：適當調(diào)整轉(zhuǎn)染時的細胞密度，過高或過低的細胞密度都可能影響轉(zhuǎn)染效率。一般來說，需通過預實驗確定每種細胞系的最佳轉(zhuǎn)染細胞密度。

2. 選擇合適的轉(zhuǎn)染方法：除了常規(guī)的脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染和陽離子聚合物轉(zhuǎn)染外，還有電穿孔轉(zhuǎn)染、病毒載體介導的轉(zhuǎn)染等方法可供選擇。對于某些難以轉(zhuǎn)染的懸浮細胞系，可嘗試不同的轉(zhuǎn)染方法，以找到適合的轉(zhuǎn)染方式。

3. 使用轉(zhuǎn)染增強劑：在轉(zhuǎn)染過程中，可添加一些轉(zhuǎn)染增強劑，如細胞松弛素 B、氯喹等，來提高轉(zhuǎn)染效率。但需注意轉(zhuǎn)染增強劑的濃度和作用時間，避免對細胞造成過度損傷。

4. 優(yōu)化培養(yǎng)條件：調(diào)整轉(zhuǎn)染后的培養(yǎng)條件，如培養(yǎng)基成分、培養(yǎng)溫度和二氧化碳濃度等，也可能對轉(zhuǎn)染效果產(chǎn)生影響。例如，某些細胞在較低的溫度下培養(yǎng)可能有助于提高轉(zhuǎn)染效率。

五、結(jié)論