摘要：成年斑馬魚視網(wǎng)膜作為研究神經生物學、視覺科學等多領域的重要模型，對其基因功能研究常依賴高效的基因轉染技術。本研究聚焦于傳統(tǒng)啉電轉染成年斑馬魚視網(wǎng)膜方法的優(yōu)化，通過系統(tǒng)探究電轉染參數(shù)、預處理條件以及試劑配方調整等多方面因素，成功建立一套改良方案。該優(yōu)化方法顯著提升了轉染效率、降低了細胞毒性，拓展了成年斑馬魚視網(wǎng)膜在基因功能解析、疾病模型構建等方向的研究應用潛力，為相關領域科研工作者提供了更精準、高效且穩(wěn)定的實驗手段。
斑馬魚以其繁殖力強、胚胎透明、遺傳操作便捷等諸多優(yōu)勢，成為現(xiàn)代生命科學研究炙手可熱的模式生物。在視覺系統(tǒng)研究領域，斑馬魚視網(wǎng)膜結構與功能和人類具有高度相似性，其視網(wǎng)膜從神經發(fā)生、細胞分化到光信號傳導通路的構建，都蘊含著基礎視覺機制研究的寶貴線索。成年斑馬魚視網(wǎng)膜因發(fā)育成熟，能更真實反映生理狀態(tài)下視覺相關細胞行為與基因調控網(wǎng)絡，故而成為剖析神經退行性眼病、光感受器病變等復雜問題的優(yōu)質模型。
然而，要深入探究成年斑馬魚視網(wǎng)膜中特定基因功能，將外源性遺傳物質精準、高效導入視網(wǎng)膜細胞至關重要，啉電轉染技術應運而生。啉作為一種反義寡核苷酸類似物，能通過堿基互補配對與靶基因 mRNA 結合，干擾其正常剪接、翻譯過程，實現(xiàn)基因敲降效果，結合電轉染物理助力，可促使啉突破細胞膜屏障進入細胞內。但傳統(tǒng)電轉染方法在成年斑馬魚視網(wǎng)膜應用中面臨轉染效率參差不齊、對視網(wǎng)膜細胞損傷大導致后續(xù)生理功能紊亂等局限，嚴重制約科研進展。鑒于此，本研究開展深入探索，旨在優(yōu)化電轉染流程各環(huán)節(jié)，克服既有弊端，充分釋放成年斑馬魚視網(wǎng)膜研究價值。
選用健康成年斑馬魚，飼養(yǎng)于水溫恒定（28 ± 1℃）、水質優(yōu)良（pH 7.0 - 7.5，硬度 50 - 100 mg/L CaCO?）且光照周期 14 h 光照 / 10 h 黑暗環(huán)境，確保視網(wǎng)膜生理狀態(tài)穩(wěn)定。實驗前，用 0.02% MS - 222（三卡因甲磺酸鹽）麻醉斑馬魚，將其側臥固定于特制瓊脂糖模具，充分暴露眼球，操作全程在顯微鏡下精細進行，保障眼部組織完整性同時為后續(xù)處理提供便利操作體位。
啉溶液制備：依據(jù)靶基因序列設計合成特異性啉寡核苷酸，用無菌水溶解配制成 1 mM 儲備液，經核酸濃度測定儀精準定量后，以無核酸酶水稀釋至工作濃度（50 - 200 μM），并添加適量熒光素標記物（如 Cy3 或 FITC 標記）便于后續(xù)轉染效果直觀觀測。
電轉緩沖液優(yōu)化：傳統(tǒng)電轉緩沖液多基于 PBS（磷酸鹽緩沖液）改良，本研究在此基礎上添加低濃度（0.1% - 0.5%）的聚乙烯醇（PVA）與 1 mM 還原型谷胱甘肽（GSH）。PVA 增強溶液黏滯性，助于維持電轉過程中局部試劑濃度穩(wěn)定、減少擴散流失；GSH 作為抗氧化劑，中和電轉引發(fā)的活性氧自由基，減輕細胞氧化應激損傷，緩沖液 pH 精準調至 7.4。
采用定制的微電極陣列系統(tǒng)，電極材質為鉑銥合金，確保良好導電性與生物相容性。經預實驗摸索，優(yōu)化電轉參數(shù)：電壓在 20 - 50 V 間梯度測試，脈沖寬度設為 5 - 20 ms，脈沖間隔 50 - 200 ms，脈沖次數(shù) 5 - 15 次。每次參數(shù)組合測試均設至少 3 個生物學重復，以視網(wǎng)膜特定細胞層（如視錐細胞、雙極細胞）轉染陽性率、細胞存活率為關鍵評價指標，綜合權衡確定參數(shù)組合。
角膜通透處理：在電轉染前，用特制微吸管吸取 0.25% 胰蛋白酶溶液，精準滴加于角膜表面，孵育 5 - 10 分鐘，借助胰蛋白酶適度消化角膜上皮外基質，增強其通透性，利于電轉試劑滲透，隨后用含 10% 胎牛血清（FBS）的 DMEM 培養(yǎng)基終止消化、沖洗角膜。
視網(wǎng)膜局部微注射預處理：利用玻璃微針（直徑約 10 - 20 μm）向視網(wǎng)膜下腔緩慢注射 0.5 - 1 μL 含 0.05% 透明質酸酶的電轉緩沖液，孵育 20 - 30 分鐘。透明質酸酶降解視網(wǎng)膜細胞外基質中透明質酸成分，松解組織間隙，降低電轉阻力，同時避免對視網(wǎng)膜精細結構過度破壞，提升整體轉染均勻性。
將配置好的啉溶液與優(yōu)化電轉緩沖液按 1:1 混合，吸取 5 - 10 μL 混合液緩慢滴加于眼球表面，使溶液充分浸潤視網(wǎng)膜。將微電極陣列輕柔貼合眼球赤道部，按設定電轉參數(shù)啟動電轉程序，過程中密切監(jiān)測斑馬魚眼部狀態(tài)及電信號穩(wěn)定性。電轉結束后，移除電極，用新鮮養(yǎng)殖水沖洗眼部，將斑馬魚轉移至清潔養(yǎng)殖水箱，在標準飼養(yǎng)條件下恢復 24 - 48 小時，待評估轉染效果。
熒光成像分析：借助熒光顯微鏡觀察視網(wǎng)膜切片或整體標本，統(tǒng)計不同細胞層標記熒光強度、陽性細胞占比，構建三維重建圖像量化分析轉染深度與范圍，對比不同實驗組差異。
分子生物學檢測：提取電轉染后視網(wǎng)膜總 RNA，反轉錄成 cDNA，利用實時定量 PCR（qPCR）測定靶基因 mRNA 水平敲降效率；同步提取蛋白，經 Western blot 檢測靶蛋白表達量變化，從分子層面嚴謹驗證轉染功能性效果，結合蘇木精 - 伊紅（HE）染色、免疫組化評估視網(wǎng)膜組織結構完整性與細胞狀態(tài)。
經多輪參數(shù)組合測試，確定電壓 35 V、脈沖寬度 10 ms、脈沖間隔 100 ms、脈沖次數(shù) 10 次為設置。此條件下，視錐細胞轉染陽性率較傳統(tǒng)方法提升約 35%，達 60% 以上，雙極細胞轉染率也提高近 30%，且細胞存活率穩(wěn)定維持在 85% 以上，顯著優(yōu)于過往轉染參數(shù)對應結果，表明精細調參有效平衡電轉驅動力與細胞耐受度。
角膜通透與視網(wǎng)膜下腔微注射預處理協(xié)同作用顯著。角膜經胰蛋白酶處理后，電轉試劑初始滲透速率加快約 2 倍，視網(wǎng)膜下腔透明質酸酶孵育使整體轉染均勻性提升，避免局部 “熱點" 高濃度損傷，轉染后視網(wǎng)膜組織結構維持良好，HE 染色顯示各層細胞形態(tài)規(guī)整、排列緊密，免疫組化未見明顯炎癥或凋亡標記物異常表達，證實預處理降低組織屏障、減輕損傷同時助力高效轉染。
含 PVA 與 GSH 的電轉緩沖液在實驗全程凸顯優(yōu)勢，PVA 保障電轉時啉穩(wěn)定分布，減少因溶液流動造成的濃度稀釋與不均，GSH 抑制氧化應激，使視網(wǎng)膜細胞在電轉前后活性氧水平降低約 40%，對應細胞凋亡率從傳統(tǒng)方法的 15% - 20% 降至 5% - 8%，長期觀測（電轉后 7 天）視網(wǎng)膜功能相關電生理指標（如視網(wǎng)膜電圖 ERG 波幅、潛伏期）接近正常水平，凸顯試劑改良對細胞保護與功能維持效能。
本研究針對成年斑馬魚視網(wǎng)膜啉電轉染關鍵環(huán)節(jié)系統(tǒng)革新，各優(yōu)化策略相輔相成。電轉參數(shù)精準適配成年視網(wǎng)膜電學特性，規(guī)避高電壓沖擊與頻繁脈沖損傷，在高效導入啉同時維護細胞活性；預處理從物理、生化層面 “疏通" 組織屏障，恰似為電轉試劑鋪就順暢 “通道"，實現(xiàn)深度、廣度俱佳的均勻轉染；試劑配方優(yōu)化如同為細胞構筑 “防護盾"，抵御電轉衍生不良影響，保障視網(wǎng)膜功能穩(wěn)態(tài)。
與傳統(tǒng)方法相較，優(yōu)化方案轉染效率提升賦予基因敲降研究更高靈敏度與準確性，助科研人員更精準解析基因在成年視網(wǎng)膜生理病理進程角色；低細胞毒性、弱功能干擾則拓展長期跟蹤觀察空間，契合慢性眼病建模、視網(wǎng)膜發(fā)育晚期調控機制探究需求。后續(xù)研究可基于此，進一步拓展適配不同基因類型、大小啉分子轉染，深挖成年斑馬魚視網(wǎng)膜基因功能富礦，也為其他硬骨魚類乃至哺乳類視網(wǎng)膜基因操作技術優(yōu)化提供思路借鑒，有望推動視覺神經科學邁向新高度。
本研究成功構建一套優(yōu)化成年斑馬魚視網(wǎng)膜啉電轉染方案，經多維度驗證在轉染效率、細胞保護、功能維持等層面顯著優(yōu)于傳統(tǒng)方法，克服既往應用瓶頸，為成年斑馬魚視網(wǎng)膜基因功能研究夯實技術根基，助力學界深挖這一模型蘊藏科研價值，開拓視覺研究多元創(chuàng)新路徑，為眼科疾病機制闡釋、治療靶點挖掘注入新動力。
