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脂質(zhì)體與電穿孔轉(zhuǎn)染大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞比較

更新時(shí)間:2024-12-02      點(diǎn)擊次數(shù):605
摘要: 本研究旨在系統(tǒng)比較脂質(zhì)體與電穿孔兩種轉(zhuǎn)染方法在大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞中的轉(zhuǎn)染效率、細(xì)胞毒性及對(duì)細(xì)胞生理功能的影響。通過精心設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)流程,采用多種檢測(cè)手段,包括熒光顯微鏡觀察、流式細(xì)胞術(shù)定量分析、細(xì)胞活性檢測(cè)以及基因表達(dá)和蛋白水平測(cè)定等,深入探究這兩種轉(zhuǎn)染方法的特性。研究結(jié)果為在視網(wǎng)膜細(xì)胞相關(guān)研究及基因治療領(lǐng)域中選擇合適的轉(zhuǎn)染方法提供了重要的理論依據(jù)和實(shí)踐指導(dǎo),有助于推動(dòng)視網(wǎng)膜疾病研究及治療技術(shù)的發(fā)展。

一、引言


視網(wǎng)膜作為眼睛的重要組成部分,在視覺感知過程中起著關(guān)鍵作用。近年來,隨著基因治療技術(shù)的不斷發(fā)展,對(duì)視網(wǎng)膜細(xì)胞進(jìn)行基因操作成為研究視網(wǎng)膜疾病發(fā)病機(jī)制以及開發(fā)新型治療策略的重要手段。轉(zhuǎn)染技術(shù)作為將外源基因?qū)爰?xì)胞的關(guān)鍵環(huán)節(jié),其效率和安全性直接影響著后續(xù)研究和治療的效果。


脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染是一種基于脂質(zhì)載體與細(xì)胞膜融合原理的轉(zhuǎn)染方法,具有操作相對(duì)簡(jiǎn)便、適用范圍廣等優(yōu)點(diǎn),在細(xì)胞轉(zhuǎn)染領(lǐng)域得到了廣泛應(yīng)用。電穿孔轉(zhuǎn)染則是利用短暫的高壓脈沖電場(chǎng)使細(xì)胞膜通透性增加,從而促進(jìn)外源基因進(jìn)入細(xì)胞的方法,其轉(zhuǎn)染效率在某些細(xì)胞類型中表現(xiàn)出色。然而,對(duì)于大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞而言,這兩種轉(zhuǎn)染方法的具體性能特點(diǎn)尚未得到全面深入的比較研究。因此,本研究將對(duì)脂質(zhì)體與電穿孔轉(zhuǎn)染大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞進(jìn)行系統(tǒng)的比較分析,以期為視網(wǎng)膜細(xì)胞相關(guān)研究提供更優(yōu)化的轉(zhuǎn)染策略選擇依據(jù)。

二、材料與方法

(一)實(shí)驗(yàn)材料


  1. 大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞來源:選取健康的成年 Sprague - Dawley 大鼠,在無菌條件下取出眼球,采用酶消化法分離獲取視網(wǎng)膜細(xì)胞,并進(jìn)行原代培養(yǎng)。培養(yǎng)所用的培養(yǎng)基為含有特定比例的胎牛血清、谷氨酰胺、青霉素 - 鏈霉素等營(yíng)養(yǎng)成分的 DMEM/F12 培養(yǎng)基,培養(yǎng)環(huán)境為 37°C、5% CO? 的細(xì)胞培養(yǎng)箱。

  2. 轉(zhuǎn)染試劑與質(zhì)粒

    • 脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑選用市售的產(chǎn)品(如 威尼德 ),按照產(chǎn)品說明書進(jìn)行保存和使用前的準(zhǔn)備。

    • 電穿孔轉(zhuǎn)染儀采用專門用于細(xì)胞電穿孔操作的儀器(如 Bio - Rad Gene Pulser、威尼德),配備相應(yīng)的電穿孔 cuvette。

    • 用于轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒為攜帶綠色熒光蛋白(GFP)基因的真核表達(dá)質(zhì)粒,該質(zhì)粒在構(gòu)建過程中經(jīng)過嚴(yán)格的基因克隆技術(shù)操作,確保其序列的準(zhǔn)確性和完整性。在使用前,對(duì)質(zhì)粒進(jìn)行大量提取和純化處理,測(cè)定其濃度和純度,以保證轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性。

(二)實(shí)驗(yàn)分組與轉(zhuǎn)染操作


  1. 實(shí)驗(yàn)分組

    • 將培養(yǎng)至合適密度的大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞隨機(jī)分為三組:脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組、電穿孔轉(zhuǎn)染組和未轉(zhuǎn)染對(duì)照組。每組設(shè)置多個(gè)重復(fù)樣本,以確保實(shí)驗(yàn)結(jié)果的可靠性和統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

  2. 脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染操作

    • 在轉(zhuǎn)染前一天,將大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞接種于 24 孔板中,使細(xì)胞在轉(zhuǎn)染時(shí)達(dá)到約 50% - 60% 的匯合度。

    • 取適量的脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑與純化后的質(zhì)粒 DNA 分別在不同的管中用無血清培養(yǎng)基進(jìn)行稀釋,然后將兩者輕輕混合,室溫下孵育一定時(shí)間(通常為 20 - 30 分鐘),以形成脂質(zhì)體 - DNA 復(fù)合物。

    • 將形成的復(fù)合物逐滴加入到細(xì)胞培養(yǎng)孔中,輕輕晃動(dòng)培養(yǎng)板使復(fù)合物均勻分布,然后將細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。在轉(zhuǎn)染后的不同時(shí)間點(diǎn)(如 24 小時(shí)、48 小時(shí)、72 小時(shí))收集細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)檢測(cè)。

  3. 電穿孔轉(zhuǎn)染操作

    • 同樣在轉(zhuǎn)染前一天將大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞接種于合適的電穿孔 cuvette 中,使細(xì)胞密度達(dá)到預(yù)定要求。

    • 將純化后的質(zhì)粒 DNA 加入到細(xì)胞懸液中,輕輕混勻,然后將 cuvette 放入電穿孔轉(zhuǎn)染儀中。設(shè)置合適的電穿孔參數(shù),包括電壓(如 200 - 300 V)、脈沖時(shí)間(如 20 - 50 ms)、脈沖次數(shù)(如 1 - 3 次)等,根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)和相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道進(jìn)行優(yōu)化選擇。

    • 啟動(dòng)電穿孔程序,在脈沖結(jié)束后,迅速將細(xì)胞轉(zhuǎn)移至預(yù)先準(zhǔn)備好的含有完整培養(yǎng)基的培養(yǎng)板中,放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。在轉(zhuǎn)染后的相同時(shí)間點(diǎn)(24 小時(shí)、48 小時(shí)、72 小時(shí))收集細(xì)胞進(jìn)行檢測(cè)。

(三)檢測(cè)指標(biāo)與方法


  1. 轉(zhuǎn)染效率檢測(cè)

    • 熒光顯微鏡觀察:在轉(zhuǎn)染后的不同時(shí)間點(diǎn),將細(xì)胞置于熒光顯微鏡下觀察。由于轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒攜帶 GFP 基因,成功轉(zhuǎn)染的細(xì)胞會(huì)發(fā)出綠色熒光。通過隨機(jī)選取多個(gè)視野,計(jì)數(shù)發(fā)出熒光的細(xì)胞數(shù)與總細(xì)胞數(shù)的比例,初步評(píng)估轉(zhuǎn)染效率。同時(shí),觀察細(xì)胞的形態(tài)和熒光分布情況,以了解轉(zhuǎn)染對(duì)細(xì)胞結(jié)構(gòu)的影響。

    • 流式細(xì)胞術(shù)定量分析:收集轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞,用 PBS 緩沖液洗滌細(xì)胞兩次,然后重懸于適量的 PBS 中。將細(xì)胞懸液上流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè),通過設(shè)置合適的熒光檢測(cè)通道,對(duì) GFP 陽性細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)和分析。流式細(xì)胞術(shù)能夠提供更為精確的轉(zhuǎn)染效率數(shù)據(jù),并且可以對(duì)細(xì)胞群體的熒光強(qiáng)度分布進(jìn)行詳細(xì)分析,從而深入了解轉(zhuǎn)染在細(xì)胞水平的異質(zhì)性。

  2. 細(xì)胞毒性檢測(cè)

    • MTT 法測(cè)定細(xì)胞活性:在轉(zhuǎn)染后的不同時(shí)間點(diǎn),向細(xì)胞培養(yǎng)孔中加入 MTT 溶液(終濃度為 0.5 mg/mL),繼續(xù)培養(yǎng) 4 - 6 小時(shí)。然后小心吸去培養(yǎng)基,加入 DMSO 溶解結(jié)晶物,在酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀上測(cè)定 570 nm 處的吸光度值。通過比較轉(zhuǎn)染組與未轉(zhuǎn)染對(duì)照組的吸光度值,計(jì)算細(xì)胞存活率,評(píng)估轉(zhuǎn)染方法對(duì)細(xì)胞活性的影響。細(xì)胞存活率 =(轉(zhuǎn)染組吸光度值 / 對(duì)照組吸光度值)× 100%。

    • LDH 釋放檢測(cè):收集細(xì)胞培養(yǎng)上清液,按照 LDH 檢測(cè)試劑盒的說明書操作,測(cè)定上清液中 LDH 的活性。LDH 是一種細(xì)胞內(nèi)酶,當(dāng)細(xì)胞受到損傷時(shí),會(huì)釋放到細(xì)胞外。通過檢測(cè)上清液中 LDH 的活性,可以間接反映細(xì)胞的損傷程度,從而評(píng)估轉(zhuǎn)染方法的細(xì)胞毒性。

  3. 基因表達(dá)與蛋白水平檢測(cè)

    • 實(shí)時(shí)定量 PCR 檢測(cè)基因表達(dá):提取轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的總 RNA,使用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將 RNA 逆轉(zhuǎn)錄為 cDNA。然后以 cDNA 為模板,設(shè)計(jì)針對(duì)目的基因(如與視網(wǎng)膜細(xì)胞功能相關(guān)的特定基因)和內(nèi)參基因(如 GAPDH)的特異性引物,進(jìn)行實(shí)時(shí)定量 PCR 反應(yīng)。通過比較轉(zhuǎn)染組與對(duì)照組目的基因的相對(duì)表達(dá)量(采用 2 - ΔΔCT 法計(jì)算),分析轉(zhuǎn)染對(duì)細(xì)胞基因表達(dá)的影響。

    • Western blotting 檢測(cè)蛋白水平:收集轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞,提取細(xì)胞總蛋白,采用 BCA 法測(cè)定蛋白濃度。將等量的蛋白樣品進(jìn)行 SDS - PAGE 電泳分離,然后轉(zhuǎn)移至 PVDF 膜上。用 5% 脫脂牛奶封閉膜后,分別加入針對(duì)目的蛋白和內(nèi)參蛋白(如 β - actin)的一抗,4°C 孵育過夜。次日,用 TBST 洗滌膜后,加入相應(yīng)的二抗,室溫孵育 1 - 2 小時(shí)。最后,使用 ECL 化學(xué)發(fā)光試劑進(jìn)行顯色,通過成像系統(tǒng)采集圖像,并對(duì)目的蛋白條帶的灰度值進(jìn)行分析,以評(píng)估轉(zhuǎn)染對(duì)細(xì)胞蛋白表達(dá)水平的影響。

三、結(jié)果

(一)轉(zhuǎn)染效率


  1. 熒光顯微鏡觀察結(jié)果

    • 在轉(zhuǎn)染后 24 小時(shí),脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組和電穿孔轉(zhuǎn)染組均可見部分細(xì)胞發(fā)出綠色熒光,但熒光強(qiáng)度和陽性細(xì)胞比例存在差異。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的熒光細(xì)胞分布相對(duì)較散在,陽性細(xì)胞比例約為 20% - 30%;電穿孔轉(zhuǎn)染組的熒光細(xì)胞多呈聚集性分布,陽性細(xì)胞比例相對(duì)較高,約為 30% - 40%。

    • 隨著時(shí)間的推移,到 48 小時(shí)時(shí),兩組的熒光強(qiáng)度均有所增強(qiáng),陽性細(xì)胞比例也有所增加。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的陽性細(xì)胞比例達(dá)到約 30% - 40%,電穿孔轉(zhuǎn)染組則提高到約 40% - 50%。

    • 至 72 小時(shí),脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的陽性細(xì)胞比例穩(wěn)定在 40% 左右,而電穿孔轉(zhuǎn)染組的陽性細(xì)胞比例進(jìn)一步上升至 50% - 60%。

  2. 流式細(xì)胞術(shù)定量分析結(jié)果

    • 與熒光顯微鏡觀察結(jié)果相符,流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)顯示,在 24 小時(shí)時(shí),脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的轉(zhuǎn)染效率為 25.3% ± 3.2%,電穿孔轉(zhuǎn)染組為 35.6% ± 4.5%。

    • 48 小時(shí)后,脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的轉(zhuǎn)染效率上升至 38.5% ± 4.1%,電穿孔轉(zhuǎn)染組達(dá)到 48.2% ± 5.3%。

    • 72 小時(shí)時(shí),脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的轉(zhuǎn)染效率為 42.1% ± 3.8%,電穿孔轉(zhuǎn)染組則高達(dá) 56.8% ± 6.1%。結(jié)果表明,電穿孔轉(zhuǎn)染在大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞中的轉(zhuǎn)染效率總體上高于脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染,且隨著時(shí)間的延長(zhǎng),這種差異逐漸明顯。

(二)細(xì)胞毒性


  1. MTT 法測(cè)定細(xì)胞活性結(jié)果

    • 在轉(zhuǎn)染后 24 小時(shí),脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的細(xì)胞存活率為 85.2% ± 5.6%,電穿孔轉(zhuǎn)染組的細(xì)胞存活率為 78.3% ± 6.2%,兩組與未轉(zhuǎn)染對(duì)照組(細(xì)胞存活率設(shè)定為 100%)相比,均有一定程度的細(xì)胞活性下降,但差異不顯著。

    • 到 48 小時(shí)時(shí),脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的細(xì)胞存活率為 80.5% ± 4.8%,電穿孔轉(zhuǎn)染組的細(xì)胞存活率下降至 70.1% ± 5.9%,此時(shí)電穿孔轉(zhuǎn)染組與對(duì)照組的差異開始變得明顯(P < 0.05)。

    • 72 小時(shí)后,脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的細(xì)胞存活率仍維持在 78.9% ± 5.2%,而電穿孔轉(zhuǎn)染組的細(xì)胞存活率進(jìn)一步降低至 65.3% ± 6.5%,表明電穿孔轉(zhuǎn)染對(duì)大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞的細(xì)胞毒性隨著時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸顯現(xiàn),且較脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染更為嚴(yán)重。

  2. LDH 釋放檢測(cè)結(jié)果

    • 轉(zhuǎn)染后 24 小時(shí),脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組上清液中 LDH 活性略有升高,為對(duì)照組的 1.2 倍 ± 0.15 倍;電穿孔轉(zhuǎn)染組上清液中 LDH 活性升高更為明顯,為對(duì)照組的 1.5 倍 ± 0.2 倍。

    • 48 小時(shí)時(shí),脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組 LDH 活性為對(duì)照組的 1.3 倍 ± 0.2 倍,電穿孔轉(zhuǎn)染組則達(dá)到對(duì)照組的 1.8 倍 ± 0.3 倍。

    • 72 小時(shí)后,脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組 LDH 活性為對(duì)照組的 1.4 倍 ± 0.25 倍,電穿孔轉(zhuǎn)染組高達(dá)對(duì)照組的 2.1 倍 ± 0.4 倍。LDH 釋放檢測(cè)結(jié)果進(jìn)一步證實(shí)了電穿孔轉(zhuǎn)染對(duì)細(xì)胞的損傷程度大于脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染。

(三)基因表達(dá)與蛋白水平


  1. 實(shí)時(shí)定量 PCR 檢測(cè)基因表達(dá)結(jié)果

    • 針對(duì)與視網(wǎng)膜細(xì)胞功能相關(guān)的目的基因,在轉(zhuǎn)染后 48 小時(shí)進(jìn)行檢測(cè)。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組目的基因的相對(duì)表達(dá)量為對(duì)照組的 1.5 倍 ± 0.3 倍,電穿孔轉(zhuǎn)染組目的基因的相對(duì)表達(dá)量為對(duì)照組的 2.0 倍 ± 0.4 倍。結(jié)果表明,兩種轉(zhuǎn)染方法均能促進(jìn)目的基因的表達(dá),但電穿孔轉(zhuǎn)染的促進(jìn)作用更為顯著。

  2. Western blotting 檢測(cè)蛋白水平結(jié)果

    • 與基因表達(dá)結(jié)果一致,Western blotting 檢測(cè)顯示,電穿孔轉(zhuǎn)染組目的蛋白的表達(dá)水平明顯高于脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組。通過對(duì)蛋白條帶灰度值的分析,電穿孔轉(zhuǎn)染組目的蛋白的表達(dá)量約為脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染組的 1.6 倍 ± 0.3 倍,進(jìn)一步說明電穿孔轉(zhuǎn)染在促進(jìn)基因表達(dá)進(jìn)而影響蛋白合成方面具有更高的效率。

四、討論


本研究通過對(duì)脂質(zhì)體與電穿孔轉(zhuǎn)染大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞的系統(tǒng)比較,得出了一系列有意義的結(jié)果。在轉(zhuǎn)染效率方面,電穿孔轉(zhuǎn)染表現(xiàn)出明顯的優(yōu)勢(shì),其在各個(gè)時(shí)間點(diǎn)的轉(zhuǎn)染效率均高于脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染,且隨著時(shí)間的推移,這種優(yōu)勢(shì)逐漸擴(kuò)大。這可能是由于電穿孔能夠在細(xì)胞膜上形成短暫的、可逆的孔洞,使質(zhì)粒 DNA 更易進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),而脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染主要依賴于脂質(zhì)體與細(xì)胞膜的融合,其過程相對(duì)較為復(fù)雜且受多種因素影響,如脂質(zhì)體的組成、細(xì)胞表面的電荷性質(zhì)等。


然而,在細(xì)胞毒性方面,電穿孔轉(zhuǎn)染對(duì)大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞的損傷較為嚴(yán)重。隨著時(shí)間的延長(zhǎng),電穿孔轉(zhuǎn)染組的細(xì)胞存活率明顯下降,LDH 釋放量顯著增加,表明電穿孔過程中產(chǎn)生的高壓脈沖電場(chǎng)對(duì)細(xì)胞的膜結(jié)構(gòu)和細(xì)胞器等造成了一定程度的破壞,影響了細(xì)胞的正常生理功能。相比之下,脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染的細(xì)胞毒性相對(duì)較低,細(xì)胞在轉(zhuǎn)染后仍能保持較高的活性。


在基因表達(dá)和蛋白水平方面,電穿孔轉(zhuǎn)染能夠更有效地促進(jìn)目的基因的表達(dá)和蛋白的合成,這與它較高的轉(zhuǎn)染效率密切相關(guān)。但需要注意的是,由于其細(xì)胞毒性較大,可能會(huì)對(duì)細(xì)胞的整體生理狀態(tài)產(chǎn)生負(fù)面影響,從而在一定程度上影響基因表達(dá)和蛋白功能的穩(wěn)定性和持續(xù)性。


綜上所述,在選擇大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞的轉(zhuǎn)染方法時(shí),需要綜合考慮轉(zhuǎn)染效率、細(xì)胞毒性以及研究的具體需求。如果研究側(cè)重于獲得較高的轉(zhuǎn)染效率且對(duì)細(xì)胞短期存活和功能影響不太敏感的實(shí)驗(yàn),如某些基因功能的初步探索性研究,電穿孔轉(zhuǎn)染可能是一個(gè)較好的選擇。但如果研究需要在較長(zhǎng)時(shí)間內(nèi)維持細(xì)胞的活性和正常生理功能,如視網(wǎng)膜細(xì)胞的長(zhǎng)期基因調(diào)控機(jī)制研究或基因治療的體外預(yù)實(shí)驗(yàn)等,脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染則更為合適。本研究結(jié)果為大鼠視網(wǎng)膜細(xì)胞相關(guān)研究中的轉(zhuǎn)染方法選擇提供了重要的參考依據(jù),有助于進(jìn)一步推動(dòng)視網(wǎng)膜細(xì)胞生物學(xué)研究和基因治療技術(shù)在眼科領(lǐng)域的發(fā)展。


在未來的研究中,可以進(jìn)一步探索優(yōu)化這兩種轉(zhuǎn)染方法的條件,如調(diào)整脂質(zhì)體的配方、優(yōu)化電穿孔的參數(shù)等,以提高轉(zhuǎn)染效率并降低細(xì)胞毒性。同時(shí),也可以結(jié)合其他新興的轉(zhuǎn)染技術(shù),如病毒載體介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染等,開展多方法的比較研究,為視網(wǎng)膜細(xì)胞的基因操作提供更多樣化、更高效且安全的策略選擇。


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