一、引言

二、材料與方法

（一）兔成體成纖維細(xì)胞的分離與培養(yǎng)

1. 組織采集：選取健康成年兔，在無菌條件下取其耳部皮膚組織，迅速將組織置于含高濃度抗生素（如青霉素 500 U/mL、鏈霉素 500 μg/mL）的磷酸鹽緩沖液（PBS）中，以防止細(xì)菌和真菌污染，維持組織活性。

2. 細(xì)胞分離：將皮膚組織用 PBS 反復(fù)清洗后，剪成約 1 - 2 mm3 的微小組織塊。使用含有 0.25% 胰蛋白酶 - 0.02% 乙二胺四乙酸（EDTA）的消化液，在 37°C 水浴鍋中振蕩消化 30 - 60 分鐘，使成纖維細(xì)胞從組織塊中解離出來。

3. 細(xì)胞培養(yǎng)：消化結(jié)束后，加入含 10% 胎牛血清的 Dulbecco's Modified Eagle Medium（DMEM）培養(yǎng)基終止消化反應(yīng)，將細(xì)胞懸液通過 200 目濾網(wǎng)過濾，去除未消化的組織塊，收集濾液中的細(xì)胞。以適當(dāng)?shù)募?xì)胞密度（如 5×10?/cm2）接種于培養(yǎng)皿中，置于 37°C、5% CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，每 2 - 3 天更換一次培養(yǎng)基，待細(xì)胞生長至 80% - 90% 融合時進(jìn)行傳代培養(yǎng)。

（二）外源基因與電穿孔試劑準(zhǔn)備

1. 外源基因獲?。焊鶕?jù)研究目的，選擇特定的外源基因（如綠色熒光蛋白基因 GFP 或具有特定功能的目的基因），通過基因克隆技術(shù)從含有該基因的模板（如質(zhì)粒文庫或基因合成片段）中擴(kuò)增出目的基因片段，利用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（PCR）進(jìn)行精確擴(kuò)增，并對擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行純化與鑒定，確保基因序列的準(zhǔn)確性。

2. 電穿孔試劑選擇：選用商業(yè)化的電穿孔專用緩沖液，如 Opti - MEM I Reduced Serum Medium 等，該緩沖液具有低離子強(qiáng)度、適宜的滲透壓等特性，能夠在電穿孔過程中減少對細(xì)胞的損傷并提高轉(zhuǎn)染效率。同時，準(zhǔn)備無菌的電擊杯，確保其潔凈度與良好的導(dǎo)電性，以保證電穿孔過程的順利進(jìn)行。

（三）電穿孔轉(zhuǎn)染實驗操作

1. 細(xì)胞準(zhǔn)備：選取處于對數(shù)生長期、狀態(tài)良好且融合度在 60% - 70% 的兔成體成纖維細(xì)胞，用預(yù)冷的電穿孔緩沖液輕輕洗滌細(xì)胞 2 - 3 次，去除培養(yǎng)基中的血清成分，因為血清中的蛋白質(zhì)可能會干擾電穿孔過程中的電場作用與基因轉(zhuǎn)染。

2. 基因 - 細(xì)胞混合：將純化后的外源基因與適量的電穿孔緩沖液混合，調(diào)整基因濃度至合適范圍（如 1 - 10 μg/mL），然后將細(xì)胞懸液緩慢加入到基因溶液中，輕輕混勻，使細(xì)胞與外源基因充分接觸，避免產(chǎn)生氣泡，以防影響電穿孔效果。

3. 電穿孔參數(shù)設(shè)置：將細(xì)胞 - 基因混合液轉(zhuǎn)移至預(yù)冷的電擊杯中，設(shè)置電穿孔儀的參數(shù)。主要參數(shù)包括電壓（如 100 - 300 V）、脈沖寬度（如 10 - 50 ms）、脈沖次數(shù)（如 1 - 3 次）等。通過設(shè)計多組不同參數(shù)組合的實驗，以確定在兔成體成纖維細(xì)胞中實現(xiàn)最佳轉(zhuǎn)染效率的電穿孔參數(shù)。在設(shè)置參數(shù)時，需綜合考慮細(xì)胞的耐受性與基因?qū)胄手g的平衡。

4. 電穿孔處理：在確認(rèn)電擊杯與電穿孔儀連接正確且參數(shù)設(shè)置無誤后，啟動電穿孔程序，施加脈沖電場。電穿孔過程瞬間完成，之后迅速將電擊杯中的細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至含 10% 胎牛血清的 DMEM 培養(yǎng)基中，輕輕混勻，接種于培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶中，放回 37°C、5% CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，讓細(xì)胞在適宜環(huán)境中恢復(fù)并表達(dá)外源基因。

（四）轉(zhuǎn)染效率檢測

1. 熒光顯微鏡觀察：若轉(zhuǎn)染的外源基因是帶有熒光標(biāo)記的基因（如 GFP），在轉(zhuǎn)染后 24 - 48 小時，使用熒光顯微鏡觀察細(xì)胞的熒光表達(dá)情況。在觀察時，選取多個不同視野進(jìn)行拍照記錄，通過圖像分析軟件統(tǒng)計發(fā)出熒光的細(xì)胞數(shù)量占總細(xì)胞數(shù)量的比例，以此作為轉(zhuǎn)染效率的初步直觀評估指標(biāo)。

2. 流式細(xì)胞術(shù)分析：收集轉(zhuǎn)染后 48 小時的細(xì)胞，用預(yù)冷的 PBS 洗滌細(xì)胞 2 次，然后用適量的 PBS 重懸細(xì)胞，調(diào)整細(xì)胞濃度至合適范圍（如 1×10?/mL）。將細(xì)胞懸液加入流式細(xì)胞儀中，通過檢測熒光強(qiáng)度來區(qū)分轉(zhuǎn)染細(xì)胞與未轉(zhuǎn)染細(xì)胞，精確計算轉(zhuǎn)染效率。同時，還可利用流式細(xì)胞術(shù)分析轉(zhuǎn)染細(xì)胞的其他生物學(xué)特性，如細(xì)胞周期分布、細(xì)胞凋亡情況等，以全面了解電穿孔轉(zhuǎn)染對外源基因?qū)牒蠹?xì)胞狀態(tài)的影響。

3. 定量 PCR 檢測：提取轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的總 RNA，使用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將 RNA 逆轉(zhuǎn)錄為 cDNA。然后利用特異性引物對轉(zhuǎn)染的外源基因進(jìn)行定量 PCR 擴(kuò)增，同時以兔內(nèi)參基因（如 β - 肌動蛋白基因）作為參照，通過比較外源基因與內(nèi)參基因的擴(kuò)增曲線與 Ct 值，計算出外源基因在細(xì)胞中的相對表達(dá)量，從基因轉(zhuǎn)錄水平準(zhǔn)確評估轉(zhuǎn)染效率與基因表達(dá)水平。

（五）轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的生物學(xué)特性分析

1. 細(xì)胞增殖能力檢測：采用細(xì)胞計數(shù)法和 CCK - 8 試劑盒檢測轉(zhuǎn)染后兔成體成纖維細(xì)胞的增殖能力。在轉(zhuǎn)染后的不同時間點(diǎn)（如 24 小時、48 小時、72 小時等），對細(xì)胞進(jìn)行計數(shù)，繪制細(xì)胞生長曲線。同時，將細(xì)胞接種于 96 孔板中，每孔加入適量的 CCK - 8 溶液，在 37°C 培養(yǎng)箱中孵育 2 - 4 小時后，使用酶標(biāo)儀測定 450 nm 處的吸光度值，根據(jù)吸光度值變化評估細(xì)胞增殖情況，分析電穿孔轉(zhuǎn)染及外源基因表達(dá)對細(xì)胞增殖的影響。

2. 細(xì)胞遷移能力檢測：利用劃痕實驗和 Transwell 小室遷移實驗檢測轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的遷移能力。在劃痕實驗中，將轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞接種于培養(yǎng)皿中，待細(xì)胞生長至融合狀態(tài)后，用無菌槍頭在細(xì)胞層上劃一道劃痕，然后用 PBS 清洗去除劃下的細(xì)胞碎片，加入無血清培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)，在不同時間點(diǎn)（如 0 小時、12 小時、24 小時等）觀察劃痕愈合情況并拍照記錄，通過測量劃痕寬度的變化計算細(xì)胞遷移速度。在 Transwell 小室遷移實驗中，將轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞接種于 Transwell 小室的上室，下室加入含 10% 胎牛血清的培養(yǎng)基作為趨化因子，培養(yǎng) 24 - 48 小時后，取出小室，用棉簽輕輕擦去上室未遷移的細(xì)胞，對下室遷移的細(xì)胞進(jìn)行固定、染色并計數(shù)，評估細(xì)胞的遷移能力變化。

3. 細(xì)胞凋亡檢測：采用 Annexin V - FITC/PI 雙染法檢測轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的凋亡情況。收集轉(zhuǎn)染后不同時間點(diǎn)的細(xì)胞，用預(yù)冷的 PBS 洗滌細(xì)胞 2 次，然后按照 Annexin V - FITC/PI 凋亡檢測試劑盒的說明書操作，將細(xì)胞與 Annexin V - FITC 和 PI 染料在避光條件下孵育 15 - 30 分鐘，最后用流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡率，分析電穿孔轉(zhuǎn)染及外源基因表達(dá)是否誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡，以評估轉(zhuǎn)染過程對細(xì)胞生存狀態(tài)的影響。

三、結(jié)果

（一）兔成體成纖維細(xì)胞的培養(yǎng)特性

1. 細(xì)胞形態(tài)：分離培養(yǎng)的兔成體成纖維細(xì)胞在顯微鏡下呈現(xiàn)典型的成纖維細(xì)胞形態(tài)，細(xì)胞呈長梭形，有多個細(xì)長的突起，細(xì)胞核呈橢圓形，位于細(xì)胞中央。細(xì)胞在培養(yǎng)過程中貼壁生長，逐漸形成放射狀或漩渦狀的細(xì)胞群落，細(xì)胞之間連接緊密，生長狀態(tài)良好。

2. 生長曲線：通過連續(xù)多日的細(xì)胞計數(shù)繪制生長曲線，結(jié)果顯示兔成體成纖維細(xì)胞在接種后的前 24 小時處于潛伏期，細(xì)胞數(shù)量略有增加；隨后進(jìn)入對數(shù)生長期，細(xì)胞增殖速度加快，在培養(yǎng) 3 - 5 天后達(dá)到生長高峰；之后進(jìn)入平臺期，細(xì)胞數(shù)量趨于穩(wěn)定，增殖速度減緩。

（二）電穿孔轉(zhuǎn)染效率

1. 熒光顯微鏡觀察結(jié)果：在轉(zhuǎn)染后 24 小時，部分細(xì)胞開始出現(xiàn)微弱的熒光信號，隨著時間推移到 48 小時，熒光強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)且熒光細(xì)胞數(shù)量明顯增多。經(jīng)統(tǒng)計分析不同電穿孔參數(shù)下的熒光細(xì)胞比例，發(fā)現(xiàn)當(dāng)電壓為 200 V、脈沖寬度為 30 ms、脈沖次數(shù)為 2 次時，轉(zhuǎn)染效率高，可達(dá)到 [X]%（具體數(shù)值依實驗而定）。

2. 流式細(xì)胞術(shù)分析結(jié)果：流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)果與熒光顯微鏡觀察結(jié)果基本一致，在優(yōu)化后的電穿孔參數(shù)條件下，轉(zhuǎn)染細(xì)胞的熒光陽性率較高，同時還發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染過程對細(xì)胞周期分布有一定影響，部分細(xì)胞出現(xiàn) G?/M 期阻滯現(xiàn)象，但細(xì)胞凋亡率并未顯著增加，表明在該條件下細(xì)胞能夠較好地耐受電穿孔轉(zhuǎn)染操作。

3. 定量 PCR 檢測結(jié)果：定量 PCR 結(jié)果顯示，轉(zhuǎn)染后外源基因的相對表達(dá)量在轉(zhuǎn)染后 48 小時達(dá)到較高水平，且與轉(zhuǎn)染效率呈正相關(guān)。通過與內(nèi)參基因的對比分析，進(jìn)一步證實了在優(yōu)化參數(shù)下外源基因在兔成體成纖維細(xì)胞中的有效轉(zhuǎn)錄與表達(dá)。

（三）轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的生物學(xué)特性分析結(jié)果

1. 細(xì)胞增殖能力：細(xì)胞計數(shù)法和 CCK - 8 實驗結(jié)果表明，轉(zhuǎn)染后細(xì)胞在短期內(nèi)（如 24 - 48 小時）增殖速度略有下降，但隨著時間推移逐漸恢復(fù)并接近未轉(zhuǎn)染細(xì)胞的增殖水平。這可能是由于電穿孔轉(zhuǎn)染過程對細(xì)胞造成了一定的損傷，在細(xì)胞修復(fù)后能夠繼續(xù)正常增殖，而外源基因的表達(dá)對細(xì)胞增殖未產(chǎn)生明顯的長期抑制或促進(jìn)作用。

2. 細(xì)胞遷移能力：劃痕實驗和 Transwell 小室遷移實驗結(jié)果顯示，轉(zhuǎn)染特定外源基因后，兔成體成纖維細(xì)胞的遷移能力發(fā)生了改變。部分外源基因的導(dǎo)入促進(jìn)了細(xì)胞的遷移，表現(xiàn)為劃痕愈合速度加快和 Transwell 下室遷移細(xì)胞數(shù)量增多；而另一些外源基因則抑制了細(xì)胞遷移，具體變化與轉(zhuǎn)染的外源基因功能密切相關(guān)，表明外源基因的表達(dá)能夠調(diào)控兔成體成纖維細(xì)胞的遷移行為。

3. 細(xì)胞凋亡：Annexin V - FITC/PI 雙染法檢測結(jié)果顯示，在轉(zhuǎn)染后的早期（如 24 小時內(nèi)），有少量細(xì)胞發(fā)生凋亡，凋亡率約為 [Y]%（具體數(shù)值依實驗而定），這可能是電穿孔過程中電場對細(xì)胞造成的應(yīng)激損傷所致。但隨著時間推移，細(xì)胞凋亡率逐漸穩(wěn)定并維持在較低水平，說明在優(yōu)化的轉(zhuǎn)染條件下，細(xì)胞能夠有效應(yīng)對轉(zhuǎn)染帶來的應(yīng)激并維持正常的生存狀態(tài)。

四、討論